组化抗原修复注意事项
经甲醛固定的部分组织细胞，因固定过程中可能会形成醛键或羧甲基而封闭部分抗原决定簇，使**组化标记敏感性明显降低，因此在染色前，有些抗原需进行修复或暴露。
抗原修复方法可分为化学方法和物理方法。化学方法是以酶消化方法，常用*及*，配制浓度与消化时间要适度。常用的物理方法有单纯加热、微波处理和压加热。在选用这三种方法时，浸泡切片的缓冲液的离子强度和ph、加热的温度和时间均影响着抗原修复效果。
1、ph的应用范围及选择
抗原修复液的ph非常重要，有效的抗原修复ph要比修复液的化学成分更重要，同样的修复液随着ph的升染色的强度逐渐增强，但ph范围为6.0-10.0。目前大*的好的抗原修复液是ph6.0的柠檬酸盐缓冲液和ph8.0的edta缓冲液。作为通用修复液碱性ph的修复液要比酸性的有效，而对固定很长时间旧的存档组织，酸性ph的修复液则于碱性的修复液。
2、抗原修复时应选择温度
70-90℃的温度对未经固定的蛋白质可发生变性，但经福尔马林固定的蛋白质，温度必须达到92℃以上方能使其变性。研究结果显示，温度为92-98℃是合适的，95℃效果好。
3、抗原修复液必须遵循自然降温规律，否则效果不好或达不到抗原修复的目的
抗原修复持续时间过后，取出放于室温中让其慢慢地降温，不能为了争取时间，强行用冰块或冷水使其降温。这是因为当温中的抗原蛋白分子链脱离了其他的束缚或联结，要有个自然环境让其自然放松下来，随着温度的降低，它们会慢慢地恢复原来的形态和构型。
4、尽量使用足量的抗原修复液
应用于抗原修复的液体，定要充足，防止切片干涸。应用大量的抗原修复液时，由于它的量较大，可延缓液体的沸腾时间，增加切片受微波辐射的量，对抗原修复将达到*。
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4、尽量使用足量的抗原修复液
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