蛋白质印迹实验方案

裂解缓冲液:为了准备在凝胶上运行的样品,需要裂解细胞和组织以释放感兴趣的蛋白质。这会溶解蛋白质,使它们可以单独迁移通过分离凝胶。我们使用 ripa 缓冲液 (beyotime p0013b) 来提取全细胞提取物和膜结合蛋白。
蛋白酶和磷酸酶抑制剂:一旦发生裂解,蛋白水解、去磷酸化和变性就开始。如果样品始终保存在冰上或 4°c 下,并且将适当的抑制剂新鲜添加到裂解缓冲液中,这些事件可以大大减慢。 pmsf是我们经常使用的蛋白酶抑制剂。
组织裂解液的制备用干净的工具解剖感兴趣的组织,最好在冰上,并尽可能快地防止蛋白酶降解。均质化前应将 ripa(含 1mm pmsf)冰冷。
将组织切成小片,对于约 20 mg 的组织,将约 250 μl 裂解缓冲液快速加入管中,用电动匀浆器(或玻璃匀浆器)匀浆直至全裂解。
在微量离心机中于 4°c 下以 10000~14000g 离心 5 分钟。轻轻地从离心机中取出管子并置于冰上,吸出上清液并置于冰上保存的新管中;丢弃颗粒。
蛋白质浓度的测定:使用 page 凝胶、bradford 测定、lowry 测定或 bca 测定。牛血清白蛋白(bsa)是一种常用的蛋白质标准品。
制备用于加载到凝胶中的样品:要变性,请使用带有阴离子变性去污剂十二烷基硫酸钠 (sds) 的上样缓冲液,并将混合物在 95-100°c 下煮沸 5 分钟。
清洁玻璃并设置电泳系统。
制备page胶,根据蛋白质的分子量选择不同浓度的分离胶:
蛋白质大小 (kda)凝胶百分比(%)
4-40 20
12-45 15
10-70 12
30-100 10
50-200 8
4%堆积胶,选择预染色的蛋白质marker proteins的大小,以帮助区分蛋白质大小和电泳示踪剂。
上样跑胶,每孔加样量20-40μg蛋白,加样时注意不要溢出到相邻孔中,造成胶戳孔和交叉污染。
按照电泳方法推荐的说明进行电泳,当溴酚蓝将凝胶耗尽时终止凝胶电泳。
将蛋白质从凝胶转移到膜上。 (根据trans-blot系统推荐的说明。)
查看膜中的蛋白质:丽春红。转印后,用丽春红染料染色约2~5min,检查转印是否成功。然后用蒸馏水冲洗掉染料。
封闭膜一般用5%脱脂牛奶,或3%~5% bsa。 4 ℃摇床振荡封闭过夜,或37 ℃封闭2小时。封闭后tbs洗涤5-10秒。
与一抗一起孵育。按照推荐的抗体稀释度,用tbst(或1%~3%脱脂牛奶)稀释抗体。然后将膜装入自封袋和固定层压机中,将抗体溶液添加到自封袋中,并确保膜与足够体积的抗体一起孵育。
37℃振荡孵育1~3 h(根据抗体效价和亲和力),或4℃过夜孵育,tbst室温摇床上洗3次,每次5~10 min。
与二抗孵育,同步骤(4),用tbst稀释,37℃振荡孵育1~3 h。
hrp 偶联抗体的化学发光、显影和固定:ecl 是使用的传统试剂盒。在暗室中,将显影剂和固定剂分别装入塑料托盘中,在离心管中混合两种试剂(a 和 b 的体积)。确保膜表面蛋白与混合物充分接触。 1~2分钟后去除残留物。
红灯处取出胶片,打开胶片夹,将胶片放在胶片上,取下胶片夹,根据信号强度调整曝光时间,记住曝光过度的胶片不适合分析。
曝光完成后,取出胶片,迅速浸入显影液中,终止显影。显影后,应立即将胶片浸入定影液中成透明膜。用自来水清洗除去残留的固定剂后,在室温下干燥。

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