GB 31656.11-2021水产品中土霉素、四环素、金霉素和多西环素残留量的测定

中华人民共和国国家标准
gb 31656.11-2021
代替gb/t 22961-2008
食品安全国家标准
水产品中土霉素、四环素、金霉素和多西环素残留量的测定
national food safety standard-
determination of oxytetracycline,tetracycline,chlortetracycline
and doxycycline residues in aquatic products
前言
本文件按照gb/t1.1-2020《标准化工作导则第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定起草。
本文件代替gb/t 22961-2008,并增加液相色谱-串联质谱测定方法。
本文件方法一对gb/t 22961-2008《河豚鱼、鳗鱼中土霉素、四环素、金霉素、强力霉素残留量的测定液相色谱-紫外检测法》进行修订。本文件与gb/t 22961-2008相比,除结构调整和编辑性改动外,主要技术内容变化如下:
——更改了标准的适用范围(见1、2008年版的1);
——更改了方法的检测器,由紫外检测器改为荧光检测器(见6.1、2008年版的5.1);
——更改了方法的部分测定步骤和检出限(见8、2008年版的7)。
本文件及其所代替文件的历次版本发布情况为:
——gb/t 22961-2008;
——本次为第一次修订。
1范围
本文件规定了水产品中土霉素、四环素、金霉素和多西环素残留量测定的高效液相色谱法。
本文件适用于鱼、虾、蟹、鳖及海参等水产品可食组织中土霉素、四环素、金霉素和多西环素残留量的测定。
2规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可(ke)少的条款。其中注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
gb/t 6682分析实验室用水规格和试验方法
gb/t 30891-2014水产品抽样规范
3术语和定义
本文件没有需要界定的术语和定义。
4原理
试样中土霉素,四环素、金霉素和多西环素经柠檬酸缓冲液提取后,固相萃取柱净化,液相色谱荧光检测器检测,外标法定量。
5试剂与材料
以下所用的试剂,除特别注明外均为分析纯;水为符合gb/t 6682规定的一级水。
5.1试剂
5.1.1甲醇(ch3oh):色谱纯。
5.1.2乙酸镁(c4h6o4mg·4h20)。
5.1.3咪唑(c3h4n2)。
5.1.4磷酸二氢钾(kh2po4)。
5.1.5柠檬酸(c9h8o7•h2o):优级纯。
5.1.6磷酸氢二钠(na2hpo4):优级纯。
5.1.7乙二胺四乙酸二钠(na2edta•2h2o):优级纯。
5.1.8冰乙酸(ch3cooh)。
5.2溶液配制
5.2.1磷酸二氢钾溶液:取磷酸二氢钾13.6g,加水适量使溶解并稀释至1000ml。
5.2.2甲醇溶液:取甲醇5 ml、水95 ml,混匀。
5.2.3柠檬酸缓冲液:取柠檬酸6.30g、磷酸氢二钠13.8g、乙二胺四乙酸二钠1.86g,加水400ml使溶解,用冰乙酸调ph至4.0,再用水稀释至500 ml。
5.2.4咪唑缓冲溶液:取咪唑68.0g、乙二胺四乙酸二钠0.40g、乙酸镁10.0g,加水800ml使溶解,用冰乙酸调ph至7.2,再用水稀释至1 000 ml,经0. 45μm水相微孔滤膜过滤后备用。
5.2.5甲醇咪唑缓冲溶液:取甲醇20 ml、咪唑缓冲溶液80 ml,混匀。
5.3标准品
盐酸四环素、盐酸金霉素、盐酸土霉素、盐酸多西环素,含量均≥95%,具体见附录a。
5.4标准溶液制备
5.4.1标准储备液(100μg/ml):分别准确称取适量标准品,用甲醇溶解稀释定容配制成土霉素、四环素、金霉素和多西环素浓度均为100μg/ml的标准储备液。-18℃以下避光储存,有效期1个月。
5.4.2混合标准中间液:分别准确移取土霉素、四环素、金霉素和多西环素标准储备液1.0 ml、1.0 ml、2.0ml和2.0ml于100ml容量瓶,用甲醇稀释并定容,配制成土霉素、四环素、金霉素和多西环素浓度分别为1.0μg/ml、1.0μg/ml、2.0μg/ml和2.0μg/ml的混合标准中间液。-18℃以下避光储存,有效期为7 d。
5.5材料
5.5.1固相萃取柱:500 mg/6 ml,oasis hlb或性能相当者。
5.5.2水相微孔滤膜:0. 22μm。
6仪器和设备
6.1高效液相色谱仪:配荧光检测器。
6.2分析天平:感量0.01 g。
6.3分析天平:感量0.00001 g。
6.4涡旋振荡器。
6.5离心机:转速6 000 r/min或以上。
6.6固相萃取装置(带负压抽滤器)。
6.7氮吹仪。
6.8组织匀浆机。
7试样的制备与保存
7.1试样的制备
按gb/t 30891-2014附录b的要求制样。
a)取均质后的供试样品,作为供试试样;
b)取均质后的空白样品,作为空白试样;
c)取均质后的空白样品,添加适宜浓度的标准工作液,作为空白添加试样。
7.2试样的保存
-18℃以下保存。
8测定步骤
8.1提取
取试样5g(准确至±0.05g),加柠檬酸缓冲液20ml,涡旋震荡2min,超声提取10min,以6000r/min离心10 min,取上清液于另一50 ml离心管中。向残渣加柠檬酸缓冲液10 ml,重复提取2次,合并3次上清液,待净化。
8.2净化
将oasis hlb固相萃取柱依次用甲醇10 ml、水10 ml、柠檬酸缓冲液5 ml活化,移入待净化液,用甲醇溶液10ml,水10ml淋洗,抽干,加甲醇10ml洗脱,收集洗脱液,40c氮气吹干,加磷酸二氢钾溶液1.0 ml溶解残渣,超声1min,过0.22μm水相微孔滤膜后,供高效液相色谱测定。
8.3标准曲线的制备
准确移取土霉素、四环素、金霉素和多西环素混合标准中间溶液适量,用甲醇咪唑缓冲溶液稀释成土霉素和四环素浓度分别为50 ng/ml、100 ng/ml、200 ng/ml、500 ng/ml、1 000 ng/ml,金霉素和多西环素浓度分别为100 ng/ml、200 ng/ml、400 ng/ml、1 000 ng/ml、2 000 ng/ml的混合标准系列工作溶液供高效液相色谱测定。以待测物峰面积为纵坐标、相应的标准溶液浓度为横坐标,绘制标准曲线。计算回归方程和相关系数。
8.4测定
8.4.1液相色谱参考条件
a)色谱柱:c18色谱柱(250mm×4.6mm,5μm),或相当者;
b)柱温:40℃;
c)进样量:30μl;
d)流速:0.8 ml/min;
e)激发波长:380 nm;
f)发射波长:520 nm;
g)流动相:甲醇-咪唑缓冲溶液。
8.4.2测定法
取试样溶液和相应的标准溶液,作单点或多点校准,以色谱峰面积定量,外标法计算。标准工作液及试样溶液中土霉素、四环素、金霉素和多西环素响应值应在仪器检测的线性范围之内。标准溶液的高效液相色谱图见附录b中的图b. 1。
8.5空白试验
取空白试料,除不加标准溶液外,采用相同的测定步骤进行平行操作。
9结果计算和表述
试样中待测物残留量按标准曲线或公式(1)计算。
式中:
x——试样中土霉素、四环素、金霉素和多西环素含量的数值,单位为微克每千克(μg/kg);
a——试样中土霉素、四环素、金霉素和多西环素的峰面积;
as——标准溶液中土霉素、四环素、金霉素和多西环素的峰面积;
cs——标准溶液中土霉素、四环素、金霉素和多西环素浓度的数值,单位为纳克每毫升(ng/ml);
v——最终试样定容体积的数值,单位为毫升(ml);
m——供试试样质量的数值,单位为克(g)。
10检测方法的灵敏度、准确度和精密度
10. 1灵敏度
本方法在水产品可食组织中土霉素和四环素的检测限均为10.0μg/kg,多西环素和金霉素的检测限均为20.0μg/kg;土霉素和四环素的定量限均为20.0μg/kg,多西环素和金霉素定量限均为40.0μg/kg。
10.2准确度
土霉素和四环素在20.0μg/kg~200μg/kg添加浓度的回收率为60%~110%;多西环素和金霉素在40.0μg/kg~ 400μg/kg添加浓度的回收率为60%~110%。
10.3精密度
本方法的批内相对标准偏差≤15%,批间相对标准偏差≤15%。

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